DCS Tools 用户手册

DCS Cloud大约 52 分钟

1. 介绍

1.1 描述

DCS Tools 是一款依托 CPU 加速技术的先进软件，在数据分析上旨在成为 BWA-MEM、GATK 以及大人群联合调用的理想替代方案，在存储上通过压缩Fastq.gz文件大小来减少存储成本。功能包含胚系突变（Germline）的全基因组（WGS）与全外显子（WES）测序数据分析，joint calling 群体变异检测工具，基于参考基因序列的Fastq文件压缩和解压缩工具。

1.2 优势和价值

1）一致且可靠的胚系变异检测工具

该工具在保证SOAPnuke、BWA和GATK各个模块算法主体逻辑不变的情况下，进行了优秀的并行化设计与重构，加速了计算和减少了不必要的I/O操作。在极大加速的基础上，还保证了结果与gatk体系的高度一致性。

工具亮点：

与 Broad Institute 的 BWA-GATK 最佳实践工作流程采用相同的数学方法，但 FASTQ 到 VCF 的速度快 16倍，BAM 到 VCF 的速度快 42 倍（以核·时作为单位进行比较）
无运行间差异，高覆盖区域无下采样
基于 CPU 的系统上运行的纯软件解决方案，跨平台兼容X86、ARM与云环境
阿里云 ecs.i4g.8xlarge
- 30x 基因组，NA12878 (HG001)，1.82 小时内（58 个核·时）

2）Joint calling，用于群体测序项目的 gVCF 合并和joint calling工具

支持百万样本的分析，是一种基于Spark的可扩展joint calling软件，已在105,000 个全基因组上应用。

工具亮点

快速：6天完成5.2万人全基因组变异联合检测（joint calling）

准确：GIAB标准品SNP F1值99.55%，INDEL F1值98.95%

规模大：支持百万级别样本的joint calling

易于使用：自动分配任务，无需用户设计并行策略。

3）FASTQ格式数据的压缩工具

沿袭了多数工具的逻辑，将FASTQ中的ID、序列、质量值三部分独立进行压缩，其中序列的压缩除了熵编码，还提供了基于HASH或BWT的序列比对模块，以提高比对成功的序列的压缩率。此外，还使用了数据块的设计，以达到压缩率与性能的平衡，而封装格式的引入，使得数据安全、部分数据独立访问、向下兼容都能轻松完成。

专门优化

一对Pair-end文件可以压缩成单个文件，且压缩率高于单独压缩；

参考基因组序列可以大于4G；

可以对质量值采用有损压缩。

方便灵活

支持Linux、Mac OSX平台，可灵活设置并发线程数，解压无license限制。

生态完整

与DCS Tools中的工具无缝对接，实现边解边算。

数据由基本单元封装，方便进行格式扩展，并保证向下兼容。

1.3 平台要求

DCS Tools 设计为运行在Linux系统的可执行程序。推荐的Linux发行版为：Centos 7, Debian 8, Ubuntu 14.04及以上的版本。

DCS Tools 对于系统硬件要求如下：cpu 至少有8核，mem至少有128G，并且建议使用读写速度更快的SSD硬盘。

1.4 软件部署（在线认证）

本软件运行时会进行License验证，以确保合法性，在线认证需要一台可以联网（用来与验证服务端通信）的机器，其它机器（往往是计算节点）不需要联网，保证能与联网机器通信即可。当然，单台联网机器也可以部署本软件。认证逻辑可参考本小节末示意图。除了软件包，还需要一份License文件，该文件可以通过云平台(cloud@stomics.tech)或者销售经理获取。

1.4.1 获取联网节点出口IP地址

请保证联网节点不经过额外的HTTP_PROXY或HTTPS_PROXY就能访问cloud.stomics.tech

在申请 License 文件时要求填写联网节点出口 IP 地址，请通过如下命令获取联网节点的出口 IP 地址：

curl --noproxy "*" -X POST https://cloud.stomics.tech/api/licensor/licenses/anon/echo

返回结果中 data 指向所需的 IP 地址：

{"code":0,"msg":"Success","data":"172.19.29.215"}

如果您遇到了如下错误：

curl: (35) error:0A000152:SSL routines::unsafe legacy renegotiation disabled

请改用下面的命令行获取 IP 地址：

echo -e "openssl_conf = openssl_init\n[openssl_init]\nssl_conf = ssl_sect\n[ssl_sect]\nsystem_default = system_default_sect\n[system_default_sect]\nOptions = UnsafeLegacyRenegotiation" | OPENSSL_CONF=/dev/stdin curl --noproxy "*" -X POST https://cloud.stomics.tech/api/licensor/licenses/anon/echo

1.4.2 获取联网节点 MAC 地址

在申请 License 文件时要求填写 MAC 地址，请通过如下命令获取联网节点的 MAC 地址：

./libexec/licproxy --print-mac

1.4.3 获取License文件

向云平台（cloud@stomics.tech）申请或者通过销售经理获取。

1.4.4 获取软件包

从云平台获取程序压缩包并解压，目录 libexec 下包含 License 代理程序（licproxy）。

1.4.5 在联网节点部署 License Proxy

请先在联网节点上使用如下命令在前台运行 License 代理程序：

./libexec/licproxy --license /path/to/XXXXXXXXX.lic

请用您的 License 文件路径代替 /path/to/XXXXXXXXX.lic，该 License 代理程序默认监听 0.0.0.0:8909，如果该地址已被其它程序使用中，您将看到类似警告：

[2025-03-27T06:34:46Z WARN  pingora_core::listeners::l4] 0.0.0.0:8909 is in use, will try again

程序将自动重试若干次直到返回，建议您手动 Ctrl + C 停止它后通过添加参数设置其它地址：

./libexec/licproxy --license /path/to/XXXXXXXXX.lic --bind 0.0.0.0:8910

若看到以下输出而没有其它异常，则代表启动成功。

[2025-03-27T07:15:52Z INFO  pingora_core::server] Bootstrap starting
[2025-03-27T07:15:52Z INFO  pingora_core::server] Bootstrap done
[2025-03-27T07:15:52Z INFO  pingora_core::server] Server starting

在进行下一步之前，您可以先通过如下命令检测 License 代理程序和云平台之间的连接是否成功：

curl http://127.0.0.1:8909/api/licensor/licenses/anon/pool

预期看到类似以下输出，代表连接成功：

{"code":0,"msg":"Success"}

在前台运行测试正常后请?Ctrl?+?C?停止它，您可以通过添加选项-d在后台运行License代理程序：

./libexec/licproxy --license /path/to/XXXXXXXXX.lic -d

它将作为守护进程或常驻进程运行。

建议一个节点只需要一个 License 代理在后台运行，也支持同一名 Linux 用户在同一个节点的后台运行多个 License 代理，但不支持多名 Linux 用户在同一个节点的后台运行多个 License 代理，除非您亲自 kill 进程或删除文件 /tmp/pingora.pid

1.4.6 运行dcs工具

如前所述，在联网节点或者能跟联网节点通信的其它节点上运行dcs工具。如何使用本工具集分析WGS或者群体等数据，可以参照quick_start包里的示例脚本。

运行工具前，需要设置好PROXY_HOST环境变量。其值为联网机器的ip和端口，需保证在当前节点可以ping通该ip。如果计算节点和联网节点为同一台机器，ip可以设置为127.0.0.1。

测试计算节点与联网节点的网络

$DCS_HOME/bin/dcs lickit --query $PROXY_HOST

运行dcs工具示例：压缩一份fastq数据

export PROXY_HOST=<ip>:<port>
$DCS_HOME/bin/dcs SeqArc compress -i input.fastq.gz -o output.fastq

1.4.7 软件更新后的部署

拿到更新后的软件包后，除非特殊说明，一般不用重新部署license proxy(1.4.4)，只需要解压新的软件包，将DCS_HOME设置为新的软件路径即可。

1.5 软件部署（离线认证）

本软件提供离线认证的选项，服务器无需联网即可实现认证，满足医院等单位服务器无法连接互联网时的认证需求。

1.5.1 获取软件和USB加密锁设备

从云平台获取程序压缩包并解压，联系客户支持人员获取USB加密锁设备。

1.5.2 开启非root用户使用USB加密锁设备的权限

使用root权限执行如下命令，开启非root用户使用USB加密锁设备的权限，执行完成后需要重新连接USB加密锁设备使权限生效。

sudo tee /etc/udev/rules.d/ft.rules > /dev/null << EOF
SUBSYSTEMS=="usb",ATTRS{idVendor}=="096e",ATTRS{idProduct}=="0209",MODE="0666"
SUBSYSTEMS=="usb",ATTRS{idVendor}=="096e",ATTRS{idProduct}=="020a",MODE="0666"
EOF

1.5.3 运行dcs工具

连接USB加密锁
将USB加密锁插入到计算机的USB接口。
设置环境变量DCS_DONGLE=1开启离线认证。
```
export DCS_DONGLE=1
```

检查USB加密锁的用量和到期时间信息。

$DCS_HOME/bin/dcs lickit --query

运行成功将返回类似如下信息：

Dongle Information:
  HID: 46E2005B86013106
  PID: B2561B76
  UID: 00000000
  Is Mother: No
  DCS Dongle Version: 1.1.0
  DCS Dongle Key Created At: 20250904162925
  Usage Limits:
    aligner Limit: 10
    variantCaller Limit: 10
    jointcaller Limit: 100
    seqarc Limit: 10995116277760 bytes (10240.00 G)
    vararc Limit: 10995116277760 bytes (10240.00 G)
    alnarc Limit: 10995116277760 bytes (10240.00 G)
  Current Usage:
    aligner Usage: 3
    variantCaller Usage: 2
    jointcaller Usage: 40
    seqarc Usage: 98782070 bytes (0.09 G)
    vararc Usage: 0 bytes (0.00 G)
    alnarc Usage: 0 bytes (0.00 G)
  Deadline: 2025-12-31 23:59:59

显示加密锁的基本信息，各个工具的用量限制，当前用量和到期时间。

运行dcs工具示例：压缩一份fastq数据

export DCS_DONGLE=1
$DCS_HOME/bin/dcs SeqArc compress -i input.fastq.gz -o output.fastq

注意事项

离线认证模式下，dcstools使用文件锁进行同进程同步以确保用量更新准确，文件锁的路径是/tmp/dcstool_dongle.lock。计算jointcaller用量时，如果分区间并行执行jointcaller，例如同一批输入gvcf文件，分chr1,chr2,...染色体区间执行dcs jointcaller任务，为了避免重复计算样本量，需要记录历史jointcalling样本信息，仅第一次执行jointcaller增加样本用量。dcstools默认将jointcaller运行的历史记录保存在/home/$USER/.local/share/dcstools/jointcaller_history.dat文件中，设置DCS_CONFIG_DIR环境变量可以更改这个路径，例如export DCS_CONFIG_DIR=/mnt/disk/dcstools/，历史记录将保存到/mnt/disk/dcstools/jointcaller_history.dat。

1.5 工具列表

场景	工具(模块)名称	功能
WGS/WES分析	aligner	质控、比对、排序和标记重复
	bqsr	碱基质量值矫正
	variantCaller	变异检测(类似GATK haplotypeCaller)
	genotyper	GVCF->VCF
	report	输出报告
群体基因组联合分析	jointcaller	联合变异检测，支持百万级样本
FASTQ数据压缩解压	SeqArc	高效无损FASTQ压缩工具
体细胞变异检测	Mutect2	体细胞变异检测
license查询等	lickit	查询可用线程数和测试网络连接
小工具	extract-vcf	简化vcf文件，缩小文件大小，减轻IO压力，主要针对bqsr和genotyper的knownSites(dbsnp等)输入
	bam-stat	统计比对信息
	vcf-stat	统计变异信息
	tbi2lix	将tbi索引文件简化为自定义的线性索引文件，用于jointcalling

2. 典型用法

2.1 WGS

WGS(Whole Genome Sequencing, 全基因组测序)是一种能够测定生物体全部基因组序列的技术。WGS分析流程一般包括数据质控、序列比对、标记重复、碱基质量值重校正、变异检测等步骤。DCS tools 遵循原始算法，对算法实现进行了性能优化，优化后的分析流程比BWA-GATK快16倍。

2.1.1 准备工作

WGS分析流程的输入文件如下：

序列比对工具需要的文件；

索引文件	描述
species.fa	参考基因组FASTA文件
species.fa.fai	用于快速定位和随机访问FASTA文件的序列区域
species.dict	索引作用，为后续处理流程提供参考序列的快速查找表
species.fa.*	比对索引文件

通过aligner工具构建比对索引，索引文件放置在FASTA同级目录，比对索引构建命令是：

dcs aligner --threads <INT> --build-index <FASTA>

FASTQ测序数据，支持gz格式；
单核苷酸多态性数据库（dbSNP）数据和已知变异位点文件，以VCF格式提供；

DCS tools 工具包提供的WGS分析流程主要包括以下步骤：

序列比对和标记重复：在序列进行比对之前会进行质控，将经过质控的序列比对到FASTA文件中记录的参考基因组上，比对结果在进行标记重复后写入BAM文件；
碱基质量值重校正：调整分配给序列每个碱基的质量分数，消除因测序方法引入的实验偏差；
变异检测：识别出测序数据相对参考基因组存在的变异位点，并为每个样本在这些位点计算基因型；

2.1.2 序列比对和标记重复

将序列比对到参考基因组上确定每条序列的位置，为进一步检测变异提供基础；标记重复消除PCR扩增产生的重复序列，降低假阳性提高变异检测准确性，这些步骤由软件alinger完成。而且aligner 还集成了数据质控功能，可以在序列比对之前对序列进行过滤和处理，从而降低错误率，避免后续分析受到噪音数据的干扰。

dcs aligner --threads             THREADNUM \
            --aln-index           INDEX \
            --fq1                 FASTQ1 \
            --fq2                 FASTQ2 \
            --read-group          RGROUP \
            --bam-out             BAMFILE \
            --fastq-qc-dir        QCDIR \
            --high-speed-storage  TEMPDIR

该命令需要以下输入：

THREADNUM: 线程数量，建议该值不要超过CPU数量；
INDEX: 参考基因组FASTA文件路径，在FASTA同级目录下存放比对软件构建的索引文件；
FASTQ1: PE测序的FASTQ1文件路径；
FASTQ2: PE 测试的FASTQ2文件路径；
RGROUP: 格式是“@RG\tID:GROUP_NAME\tSM:SAMPLE_NAME\tPL:PLATFORM“, 其中GROUP_NAME 是read group标识符，SAMPLE_NAME表示样品名称，PLATFORM表示测序平台；
BAMFILE: 经过标记重复后的BMA文件；
QCDIR: 质控报告的输出位置；
TEMPDIR: 临时文件的存储路径，若该路径处于高速存储设备，则有利于提升软件性能；

2.1.3 碱基质量值矫正

由于存在系统误差，序列碱基质量值并不总是完全准确，需要对序列的碱基质量值重校正。该步骤可以纠正系统偏差生成更精确的质量分数，提高变异检测准确性，减少假阳性和假阴性。统一质量评估标准符合GATK推荐的最佳实践，该步骤由软件bqsr完成。

dcs bqsr --threads          THREADNUM \
         --in-bam           BAMFILE \
         --reference        FASTA \
         --known-sites      KNOWN_SITES \
         --recal-table      RECAL_TABLE

该命令需要以下输入：

THREADNUM: 线程数量，建议该值不要超过CPU核数；
BAMFILE: 输入文件，序列比对和标记重复后生成的BAM文件；
FASTA: 参考基因组FASTA文件路径，确保使用参考基因组和序列比对阶段使用的相同；
KNOWN_SITES: 单核苷酸多态性数据库数据和已知变异位点文件；
RECAL_TABLE: 输出文件，保存用来矫正碱基质量值的信息

2.1.4 变异检测

检测SNP和INDEL变异，生成gvcf文件，同时生成bam的统计信息，统计文件与GVCF同目录，名字为bamStat.txt。该步骤由软件variantcaller完成

dcs variantCaller -I INPUT_BAM \
                  -O OUTPUT_GVCF \
                  -R REFERENCE \
                  --recal-table RECAL_TABLE
                  -t THREADUM

该命令需要以下输入：

INPUT_BAM：2.1.2输出的BAM文件（排序标记重复后）。
OUTPUT_GVCF：输出gvcf文件。
REFERENCE：参考基因组FASTA文件。
RECAL_TABLE：输入文件，包含矫正碱基质量值所需要的信息，由2.1.3步骤生成。
THREADNUM：线程数量，建议该值不要超过CPU核数。

对于单个样本，如果仅仅需要获取包含变异记录的vcf文件，可以使用genotyper软件。

dcs genotyper -I INPUT_GVCF \
              -O OUTPUT_VCF \
              -s QUAL \
              -t THREDNUM

该命令需要以下输入：

INPUT_GVCF：来自于variantcaller的GVCF文件。
OUTPUT_VCF：输出VCF文件。
QUAL：变异质量值阈值，大质量值大于或等于QUAL的记录将被输出。
THREADNUM：线程数量，建议该值不要超过CPU核数。

2.1.5 报告生成

可以根据每个样本的统计文件进行整合，生成可视化HTML报告文件

dcs report --sample SAMPLE_NAME \
           --filter QCDIR \
           --bam_stat BAMStat \
           --vcf_stat VCFStat \
           --output OUTPUT_DIR

该命令需要以下输入：

SAMPLE_NAME：样本命名。
QCDIR：aligner生成的质控统计报告文件夹。
BAMStat：variantCaller结果目录下的bamStat.txt。
VCFStat：vcf统计结果，默认在工作目录下的vcfStat.txt。
OUTPUT_DIR：报告输出目录。

2.2 WES

与WGS步骤基本相同，仅在variantCaller步骤有区别，该步骤需要增加一个区间参数(-L)

dcs variantCaller -I INPUT_BAM \
              -O OUTPUT_GVCF \
              -R REFERENCE \
              --recal-table RECAL_TABLE
              -L INTERVAL_FILE
              -t THREADUM

INTERVAL_FILE：记录WES区间的bed文件，按照惯例其中每行格式如下

chr<tab>start<tab>end

其中start和end位置是0-based表示，属于左闭右开的区间。

2.3 Joint Calling

Joint Calling是一种检测群体变异的方法，这里特指以多个gvcf文件为输入，合并多个样本的变异并重新计算样本基因型的过程。DPGT是一个分布式的spark程序，可以高效完成大规模样本的Joint Calling工作。dcs jointcaller是DPGT工具的一个包装器，用于运行单机模式的DPGT。

# 设置JAVA_HOME为jdk8
export JAVA_HOME=/path_to/jdk8
# 将spark bin加入到PATH，用于调用spark-submit
export PATH=/path_to/spark/bin/:$PATH
dcs jointcaller \
    -i GVCF_LIST \
    -r REFERENCE \
    -o OUTDIR \
    -j JOBS \
    --memory MEMORY \
    -l REGION

DPGT依赖java8，请设置JAVA_HOME=/path_to/jdk8。spark推荐2.4.5及以上的版本，spark 2.4.5下载路径：https://archive.apache.org/dist/spark/spark-2.4.5/spark-2.4.5-bin-hadoop2.6.tgzopen in new window

该命令需要如下输入：

GVCF_LIST：输入的gvcf列表，是一个文本文件，每行一个gvcf路径。注意gvcf需要有匹配的tbi索引文件，程序默认通过gvcf路径+.tbi查找gvcf相匹配的tbi索引文件。

REFERENCE：参考基因组fasta文件路径，注意这个fasta文件需要与生成gvcf是使用的fasta文件一致。程序同时需要与fasta文件匹配的.dict和.fai文件，例如fasta文件名是hg38.fasta，那么程序也需要读取hg38.dict, hg38.fasta.fai。

OUTDIR：输出文件夹，结果vcf路径是OUTDIR/result.*.vcf.gz。

JOBS：并行的任务数目，使用的线程数目是JOBS个，JOBS是一个整型值，范围是1到机器的线程数目。

MEMORY：java最大堆内存大小，内存的单位是"g"或"m"。内存大小和JOBS值和样本量存在关联，对于1000样本，推荐每个job分配2g内存，对于2000-5000样本，推荐每个job分配4g内存，对于5000-100000样本，推荐每个job分配6g内存，对于100000-500000样本，推荐每个job分配8g内存。

REGION：目标区域。支持输入字符串和一个bed路径，区域字符串格式与bcftools定义的格式一致，例如："chr20:1000-2000", "chr20:1000-", "chr20"，如果需要指定多个区域，请指定多个-l参数，例如指定处理chr1和chr2:1000-2000可以这样做：-l chr1 -l chr2:1000-2000

2.4 FASTQ压缩

SeqArc 模块用于对 FASTQ数据进行高效压缩与解压缩。该模块针对二代短读长和三代长读长测序数据分别优化了压缩策略，并支持三种不同的压缩模式：

无参考模式 — 不依赖任何参考文件，压缩速度较快，压缩比则较低。
单参考模式 — 使用指定的参考基因组（FASTA），在压缩/解压过程中提高压缩比与一致性。
多参考模式 — 提供多个参考基因组，程序自动匹配最合适的单个FASTA用于压缩与解压。

相比通用压缩工具，SeqArc模块在存储效率和解压速度上具有显著优势，尤其适用于大规模测序数据存档和传输场景。

2.4.1 环境与输入输出要求

2.4.1.1 待压缩文件要求

FASTQ 文件，支持未压缩文本格式（.fq或.fastq）及gz压缩格式（.fq.gz或.fastq.gz）。

2.4.1.2 参考文件要求

如果使用单参考模式或多参考模式，需要提供参考基因组 FASTA 文件。

若使用多参考模式，索引目录中应有多个 FASTA 文件。

需要下载并解压 NCBI taxonomy 数据包 taxdump.tar.gz（http://ftp.ncbi.nih.gov/pub/taxonomy/taxdump.tar.gzopen in new window）至该目录（占485MB空间），以支持参考基因组匹配。

2.4.1.3 压缩输出文件格式

压缩后：.arc 文件。

解压后：FASTQ或FASTQ.gz 文件（gz可指定压缩级别）。

2.4.2 索引构建

2.4.2.1 用法（Usage）

dcs SeqArc index [options] -r /path/to/ref.fa
dcs SeqArc index [options] -K /path/to/ref_dir/

2.4.2.2 功能说明

建立参考基因组的索引，以支撑“单参考压缩”与“多参考压缩”。

如果指定 -K（多个参考 FASTA 所在目录），将构建分类数据库，使压缩阶段能自动选择最合适的参考，解压阶段也能自动选择压缩时使用的参考。

用「dcstools SeqArc index -r REF -o OUTDIR 」命令会生成两个用于压缩的索引，分别是二代短读长的索引和三代长读长的索引。以人类基因组为例，GRCh38.fa为3.1GB，建索引耗时约半小时，输出二代短读长索引GRCh38.fa.mini_28_10，占14GB，输出三代长读长索引GRCh38.fa.similar_26_23，占6.1GB，++过程中峰值内存约35GB，对于比人类基因组更大的FASTA，消耗内存会成比例增加++。

2.4.2.3 参数说明

参数	说明	默认值 / 要点
`-r, --ref <file>`	指定一个参考 FASTA 文件	必要用于单参考模式
`-K, --clsdb <dir>`	指定包含多个参考 FASTA 的目录	用于物种识别模式
`-H, --hitlimit <int>`	在参考匹配时最大的匹配数	默认 2
`-t, --thread <int>`	使用线程数	默认 8
`-o, --output <dir>`	索引输出目录	若未指定则使用当前目录或默认子目录
`-h, --help`	显示帮助信息	—

2.4.3 压缩

2.4.3.1 用法（Usage）

dcs SeqArc compress [options] -i reads.fq -o reads.arc
dcs SeqArc compress [options] -r /path/to/ref.fa -i reads.fq -o reads.arc
dcs SeqArc compress [options] -K /path/to/ref_dir/ -i reads.fq -o reads.arc

2.4.3.2 功能说明

将 FASTQ 文件压缩为 .arc 格式。

三种压缩模式可选：无参考、单参考、多参考。

值得注意的是，尽管多参考模式使用了多个FASTA，但只会从多个建库的FASTA中尝试找到与当前FASTQ最接近的一个（或者因皆不匹配，不使用任何一个，选择无参考模式），在压缩和解压过程中依然只有一个FASTA文件作为参考。

2.4.3.3 参数说明

参数	说明	默认值 / 建议
`-i, --input <file>`	输入 FASTQ 文件	必填
`-o, --output <file>`	输出文件，会增加判定，保证输出文件后缀为 `.fq.arc`或`.fastq.arc`	必填
`-r, --ref <file>`	单参考 FASTA	可选
`-K, --clsdb <dir>`	多参考目录，用于物种识别	可选
`-H, --hitlimit <int>`	参考匹配数上限	默认 2
`-J, --clsmin <float>`	最小读 hit 比例	默认 0.6
`-L, --clsnum <int>`	用于分类判断的读数样本数目	默认 10000
`-t, --thread <int>`	线程数	默认 8
`-f, --force`	覆盖已有输出文件	—
`--pipein`	从管道中读取输入	适合流式处理
`--inputname <str>`	指定原始FASTQ 名称，仅当使用 `--pipein` 时有用，该名称于解压且不指定输出文件名时被使用	—
`--blocksz <size>`	块大小，以 MB 为单位	默认 50
`--ccheck`	压缩后立即解压校验内容，慢但安全	—
`--calcmd5`	计算输入 FASTQ 的 MD5 校验和	用于后续校验
`--slevel <int>`	序列压缩级别（8–15）	默认 10
`--verify <int>`	校验模式：0（无），1（整个块），2（整个块 + 名称、序列、质量分别校验）	默认 1
`-h, --help`	显示帮助信息	—

2.4.4 解压

2.4.4.1 用法（Usage）

dcs SeqArc decompress [options] -i reads.arc -o reads.fq
dcs SeqArc decompress [options] -r /path/to/ref.fa -i reads.arc -o reads.fq
dcs SeqArc decompress [options] -K /path/to/ref_dir/ -i reads.arc -o reads.fq

2.4.4.2 功能说明

将 .arc 文件解压为 FASTQ 文件。

如果压缩时用了参考或物种识别库，则解压时也应提供相应参考或参考库，以保证正确恢复序列。

2.4.4.3 参数说明

参数	说明	默认值 / 建议
`-i, --input <file>`	输入 `.arc` 文件	必填
`-o, --output <file>`	输出 FASTQ 文件路径（若不指定则输出到标准输出）	—
`-r, --ref <path>`	单参考 FASTA 文件或目录	如果压缩时使用了 `-r` 模式
`-K, --clsdb <dir>`	多参考目录，用于物种识别	如果压缩时使用了 `-K` 模式
`-t, --thread <int>`	线程数	默认 8
`-f, --force`	覆盖已有输出文件	—
`--type <int>`	输出类型：0 = gz 压缩 FASTQ；1 = 纯 fastq 文本	默认 0
`--gzlevel <int>`	gzip 压缩级别	默认 4
`--dcheck`	写入后再次读入并校验	较慢但更可靠
`--show`	若压缩时使用了 `--calcmd5`，显示原始 FASTQ 的 MD5 值	—
`-h, --help`	显示帮助信息	—

2.4.5 检查

2.4.5.1 用法（Usage）

dcs SeqArc check [options] -i reads.arc 
dcs SeqArc check [options] -r /path/to/ref.fa -i reads.arc 
dcs SeqArc check [options] -K /path/to/ref_dir/ -i reads.arc

2.4.5.2 功能说明

检查 .arc 文件是否完全无损。

如果压缩时用了参考或物种识别库，则检查时也应提供相应参考或参考库。

2.4.5.3 参数说明

参数	说明	默认值 / 建议
`-i, --input <file>`	输入 `.arc` 文件	必填
`-r, --ref <path>`	单参考 FASTA 文件或目录	如果压缩时使用了 `-r` 模式
`-K, --clsdb <dir>`	多参考目录，用于物种识别	如果压缩时使用了 `-K` 模式
`-t, --thread <int>`	线程数	默认 8
`-f, --force`	覆盖已有输出文件	—
`-h, --help`	显示帮助信息	—

2.4.6 输出统计信息

2.4.6.1 用法（Usage）

dcs SeqArc stat [options] -i reads.arc

2.4.6.2 功能说明

输出 .arc 文件在压缩过程中统计得到的数据。

2.4.6.3 参数说明

参数	说明	默认值 / 建议
`-i, --input <file>`	输入 `.arc` 文件	必填
`-h, --help`	显示帮助信息	—

2.4.7 参数选择与使用建议

状况	建议模式	关键参数调优
数据量非常大，希望最大压缩率	单参考 (`-r`) 或多参考 (`-K`) 模式	提高 `--slevel`，使用更多线程；确认参考基因组与样本物种匹配良好
数据种类混杂、物种未知	多参考模式	准备好多个参考 FASTA，并下载 taxonomy 数据；调节 `-L`、`-clsmin` 确保分类准确
要求速度快，对压缩率要求不高	无参考模式	使用默认压缩级别即可，不用 `-r` 或 `-K`；减少校验选项（如关闭 `--ccheck`、`--verify`）
希望压缩与解压后的数据完全一致	开启校验选项	用 `--ccheck`（压缩后校验），用 `--dcheck`（解压校验），保存 MD5 校验值

2.4.8 示例

2.4.8.1 索引构建

首先需要进行文件系统的句柄设置

# 二者选一即可
# 仅对当前会话临时生效，若需要长期生效，需添加至环境变量
ulimit -n 65535  # 设置软限制为65535
ulimit -Hn 65535 # 设置硬限制为65535（需要root权限）

对于单参考的情况，直接创建参考序列的索引文件
```
dcs SeqArc index -r REF -o OUTDIR 
```
对于多参考的情况，创建物种识别库索引和每个物种的索引文件

# i.新建一个多物种文件目录
mkdir fasidx && cd fasidx

# ii.下载物种关系文件并解压
wget http://ftp.ncbi.nih.gov/pub/taxonomy/taxdump.tar.gz
tar xzf taxdump.tar.gz

# iii.下载需要用到的各个物种FASTA到/path/to/fa目录中，将fa.gz解压成fa
gunzip ./*fa.gz

# iv.创建物种识别库索引clsf.cdb,clsf_del.cdb,clsf_opt.cdb,clsf_tax.cdb
dcs SeqArc index -K .

# v.为每个物种（如aaa.fa）创建对应的比对索引
dcs SeqArc index -r aaa.fa

2.4.8.2 使用dcs进行压缩

用户如果知道fastq的物种，可以使用【-r】参数直接选择对应物种的参考序列进行压缩：

dcs SeqArc compress -r REF \
                    -i FASTQ \
                    -o ARC \
                    -t THREADNUM

如果用户不知道具体物种，可以使用物种识别库进行有参压缩，程序会利用物种识别库分析输入数据的物种，然后选用对应的索引文件进行有参压缩

dcs SeqArc compress  -K REFDIR \
                     -i FASTQ \
                     -o ARC \
                     -t THREADNUM

如果用户没有参考序列，也可以进行无参压缩

dcs SeqArc compress  -i FASTQ \
                     -o ARC \
                     -t THREADNUM

该命令需要输入下述参数：

REF: 输入的参考序列路径
REFDIR ：包含多物种参考序列的目录
FASTQ：输入的fastq文件路径
ARC：输出的压缩文件路径
THREADNUM: 设置的线程数

2.4.8.3 使用dcs进行解压

用户如果知道压缩使用的具体参考序列，可以使用【-r】参数直接选择对应物种的参考序列进行压缩

dcs SeqArc decompress  -r REF \
                       -i ARC \
                       -o FASTQ \
                       -t THREADNUM

用户如果使用物种识别库进行的压缩，解压时需要指定物种识别库路径

dcs SeqArc decompress  -r REFDIR \
                       -i ARC \
                       -o FASTQ \
                       -t THREADNUM

用户如果是无参压缩，解压也是无参解压

dcs SeqArc decompress  -i ARC \
                       -o FASTQ \
                       -t THREADNUM

该命令需要输入下述参数：

REF: 输入的参考序列路径
REFDIR ：包含多物种参考序列的目录
FASTQ：输出的fastq文件路径
ARC：输入的压缩文件路径
THREADNUM: 设置的线程数

2.4.8.4 使用单独解压工具进行解压

如果客户没有购买DCS Tools，单需要解压缩arc格式的文件，可以用独立的免费解压工具对数据进行解压缩，解压工具软件包（Seqarc_decompress）向销售获取。

用户如果知道压缩使用的具体参考序列，可以使用【-r】参数直接选择对应物种的参考序列进行压缩

SeqArc_decompress      -r REF \
                       -i ARC \
                       -o FASTQ \
                       -t THREADNUM

用户如果使用物种识别库进行的压缩，解压时需要指定物种识别库路径

SeqArc_decompress      -r REFDIR \
                       -i ARC \
                       -o FASTQ \
                       -t THREADNUM

用户如果是无参压缩，解压也是无参解压

SeqArc_decompress      -i ARC \
                       -o FASTQ \
                       -t THREADNUM

该命令需要输入下述参数：

REF: 输入的参考序列路径
REFDIR ：包含多物种参考序列的目录
FASTQ：输出的fastq文件路径
ARC：输入的压缩文件路径
THREADNUM: 设置的线程数

2.4.9 注意事项

若压缩时使用 -r 或 -K 模式，解压时必须提供相应参考或目录，以保证内容完整且一致性高。
多线程可以加速，但资源（CPU + 内存）受限时可能引起性能瓶颈。
较高压缩级别（--slevel 大）与校验选项会显著增加运行时间。
文件覆盖（-f, --force）慎用，以免误覆盖重要数据。
在使用 --pipein 或从标准输入读取时，推荐手动指定 --inputname 用于正确标识输入文件名，避免解压后文件名不明确。

3. 工具参数详细说明

3.1 aligner

aligner支持的命令行参数如下：

--threads: 线程数量，建议不超过CPU核数
--fq1：输入数据fastq1；若是多文件，支持逗号分割，支持文件列表；
--fq2：输入数据fastq1；若是多文件，支持逗号分割，支持文件列表；
--seqarc-ref：SeqArc格式文件的解压需要的索引文件；
--read-group：格式是“@RG\tID:GROUP_NAME\tSM:SAMPLE_NAME\tPL:PLATFORM“, 其中GROUP_NAME 是read group标识符，SAMPLE_NAME表示样品名称，PLATFORM表示测序平台；
--build-index: 构建比对工具需要的索引文件；
--aln-index：序列比对需要的FASTA路径，注意配套的索引文件和FASTA处于相同目录；
--mark-split-hits-secondary：将较短的拆分命中标记为次要
--use-soft-clipping-for-sup-align：使用软裁剪进行补充比对
--no-markdup：不进行标记重复；
--bam-out：输出BAM文件
--high-speed-storage：临时文件的存储路径，若该路径处于高速存储设备，则有利于提升软件性能；
--fastq-qc-dir: FASTQ 质控报告输出目录；
--no-filter：不过滤FASTQ数据
--output-clean-fq：输出clean reads
--qualified-quality-threshold: 合格碱基质量阈值（默认是12）
--low-quality-ratio: 低质量值碱基比例阈值（默认是0.5）
--mean-qual：平均质量值阈值
--quality-offset：质量值偏移，典型值为33、64。若设置为0，则该值由程序推断（默认值：33）
--adapter1：read1的接头序列，全大写
--adapter2：read2的接头序列，全大写
--adapter-max-mismatch：adapter查找时最大允许碱基错配数量（默认值是2）
--adapter-match-ratio：adapter的最短匹配长度比例（默认是0.5）
--trim-adapter：从reads序列中截去adapter, 而不是直接丢弃reads;
--min-read-len：最小reads长度阈值（默认是30）
--n-base-ratio：N碱基比例阈值（默认是0.1）
--trim-ends: 截去reads两端一定数量的碱基，格式是逗号分隔的整数；

3.2 bqsr

bqsr支持的命令行选项如下：

--threads: 线程数量，建议不超过CPU核数；
--in-bam: 经过标记重复的BAM文件；
--out-bam: 碱基质量值校正后生成BAM存放的路径，如果不加该参数，将会只生成recal table；
--reference: 参考基因组FASTA文件，该文件和序列比对阶段使用的参考基因组相同；
--recal-table: 输出文件，保存用来矫正碱基质量值的信息
--known-sites: 单核苷酸多态性数据库数据和已知变异位点文件，支持文本和gz压缩格式；
--interval: BED文件；
--interval-padding: BED区间两边填充碱基个数；

3.3 variantCaller

variantCaller的详细参数说明如下：

-I, --input <file1> <file2> ...：输入bam文件路径，可以接受多个bam路径，以空格分割。
-O, --output <file>：输出vcf/gvcf BGZF文件，程序自动创建相应的索引文件。
-R, --reference <file>：参考基因组fasta文件路径。
--recal-table <file>: 输入文件，用来矫正碱基质量值
-H, --help：打印帮助信息。
--version：打印版本号。
-L, --interval <file>：目标区间bed文件路径。
-P, --interval-padding <int>: 区间向两侧扩展的大小，必须是非负整数。（默认值：0）
-Q, --base-quality-score-threshold <int>：碱基质量值阈值，质量值低于该阈值时将会被置为最小值6。（默认值：18）
-D, --max-reads-depth <int>：每个比对起始位置保留的最大reads数目。reads数目超过该阈值时将进行下采样。（默认值：50）
-G, --gvcf-gq-bands <int1> <int2> ...：参考置信模型（Reference confidence model）GQ分组，输入空格分隔的多个int。（默认值：[1,2,3,...,59,60,70,80,90,99]）
-t, --threads <int>：程序使用的线程数目，范围是[1,128]。（默认值：30）
--pcr-indel-model <str>: PCR indel模型，参数范围：{NONE, HOSTILE, CONSERVATIVE, AGGRESSIVE}。（默认值：CONSERVATIVE）
--emit-ref-confidence <str>：运行参考置信打分模型，参数范围：{NONE, BP_RESOLUTION, GVCF}，NONE：不运行参考置信打分模型；BP_RESOLUTION：运行参考置信打分模型，每个位点都输出一个变异记录；GVCF：运行参考置信打分模型，按照-G参数对参考置信位点（ALT=<NON\_REF>）按照GQ值进行分组输出。(默认值：NONE)
--compression-level <int>：输出vcf/gvcf BGZF文件压缩等级，范围是[0,9]。（默认值：6）

3.4 genotyper

genotyper的功能是处理单个样本的gvcf文件，输出仅仅包含变异记录的vcf文件，如果需要对处理多个gvcf文件并进行联合变异检测(joint calling)请使用高性能的DPGT软件。genotyper的详细参数说明如下：

-I, --input <file>: 输入gvcf文件路径。
-O, --output <file>：输出包含基因型的vcf BGZF文件，程序自动创建相应的索引文件。
-s, --stand-call-conf <float>: 变异质量值阈值，质量值大于或等于该值的变异将被输出。(默认值10.0)
-D, --dbsnp <file>: dbsnp文件
-t, --threads <int>：程序使用的线程数目。（默认值6）
--version：打印版本号。
-h, --help：打印帮助信息。

3.5 jointcaller (DPGT)

jointcaller是DPGT工具的一个包装器，用于便捷地运行单机模式DPGT。DPGT是一个分布式Joint Calling工具，它的详细参数说明如下：

-i,--input <FILE>：输入gvcf文件列表，是一个文本文件，每行一个gvcf路径。.
--indices <FILE>：可选参数，程序默认通过在gvcf路径末尾加.tbi获取索引文件路径，通过该参数可以指定索引文件路径，该参数需要输入一个文本文件，每行一个索引路径，索引路径的顺序需要与gvcf路径的顺序匹配。.
-use-lix <Boolean>：使用lix索引格式。lix文件是DPGT实现的一种简化索引文件，可以通过tbi2lix程序将tbi索引转换成lix索引，lix索引的大小仅仅是tbi索引的约1/80。可选参数：true, false（默认值：false）
--header <FILE>：可选参数，使用一个预先计算的vcf头文件，避免重复计算。
-o,--output <DIR>：输出文件夹。
-r,--reference <FILE>：参考基因组fasta文件。
-l,--target-regions <STRING>：目标区域字符串或bed文件，默认处理全基因组。
-j,--jobs <INT>：并行任务数目（默认值：10）
-n,--num-combine-partitions <INT>：合并变异阶段的分区数目，默认值是样本数目的平方根，向下取整。(默认值：-1)
-w,--window <INT>：每个合并-基因型计算过程处理的区域大小，（默认值：300M)
-d,--delete <Boolean>：是否删除临时文件。可选参数: true, false，(默认值：true）
-s,--stand-call-conf <FLOAT>：质量值阈值，变异记录的质量值大于或等于该值时将被输出，（默认值：30.0）
--dbsnp <FILE>：dbsnp vcf文件路径，用于注释dbsnp ID。
--use-old-qual-calculator <Boolean>：是否使用旧质量值计算器，设为true时使用旧质量值计算器，旧质量值计算器的结果与GATK v4.1.0设置--use-old-qual-calculator true --use-new-qual-calculator false结果匹配，设为false时使用新质量值计算器，新质量值计算器的结果与GATK v4.1.1后的版本结果匹配，可选参数: true, false，(默认值：true）
--heterozygosity <FLOAT>：杂合SNP变异的先验概率，(默认值：0.001)
--indel-heterozygosity <FLOAT>：杂合INDEL变异的先验概率，(默认值：1.25E-4）
--heterozygosity-stdev <FLOAT>：SNP和INDEL变异先验概率的标准差， (默认值：0.01）
--max-alternate-alleles <INT>：最大等位基因数目，等位基因数目超过该值的变异，程序仅保留可能性最大的该值个等位基因，(默认值：6）
--ploidy <INT>：倍性， (默认值：2）
-h,--help：打印帮助信息并退出。
-V,--version：打印版本号并退出。

3.6 SeqArc

3.6.1 创建索引功能，子命令【index】

创建索引参数如下：

-h, --help ：获取创建索引参数使用帮助信息
-r, --ref <file> : 设置输入的参考序列文件（fasta）路径
-K, --clsdb <dir> : 设置输入的多个物种的参考序列文件所在的目录，目录下面需要存在文names.dmp和nodes.dmp，这两个文件可以从ttp://ftp.ncbi.nih.gov/pub/taxonomy/taxdump.tar.gz 下载
-H, --hitlimit <int> : 设置在分类法上minimizer的命中计数，默认是【2】
-t, --thread <int> : 设置线程数，默认是【8】
-o, --output <dir>: 设置输出目录，用于存放生成的参考序列文件对应的索引文件
--aligntype <int> : 设置生成索引文件的比对方式，默认是【2】【1--hash 2--minimizer 3-- longseq】

已知fastq的物种，可以使用【-r】参数直接选择对应物种的参考序列生成对应的索引文件，使用【-o】参数保存生成的索引文件，然后使用这个索引文件进行压缩解压。

未知fastq的物种，可以使用【-K】参数对目录下所有的参考序列创建一个物种识别库索引。然后再对每一个参考序列使用【-r】参数创建对应的索引文件，此时【-o】的目录需要和【-K】的输入目录保持一致。

3.6.2 压缩功能, 子命令【compress】

压缩参数如下：

-h, --help : 获取压缩参数的使用帮助说明
-r, --ref <file>: 设置输入的参考序列路径，该路径下需要存在对应生成的索引文件
-K, --clsdb <dir>:设置输入的多个物种的参考序列文件所在的目录，该目录下需要存在生成的物种识别库文件，和各个物种对应的索引文件
-H, --hitlimit<int>: 设置在分类法上最小化器的命中计数，默认是【2】。保持和创建参数一致
-J, --clsmin <float>:设置物种识别时，判断物种的最小命中率，默认是【0.6】
-L, --clsnum <int> :设置物种识别时，需要从fastq读取多少条read用于判别种类，默认是【10000】
-t, --thread <int> : 设置线程数，默认是【8】
-f, --force : 设置输出文件是否强制覆盖已有的同名文件
-i, --input <file> : 设置输入的fastq文件
--pipein : 设置输入的是否是管道数据
-o, --output <file> :设置输出的文件路径，会自动在尾部添加【.arc】后缀
--blocksz <int> ：设置压缩时每个数据块大小，默认是【50】
--ccheck ：设置是否在压缩完成且数据落盘后，再执行一遍解压逻辑，保证数据的完整性
--calcmd5 ：设置是否在压缩时计算输入文件的md5，并保存到压缩文件中
--aligntype <int> ：设置选用的压缩比对方式，默认是【2】
-a, --archive <dir>: 设置输入的要打包压缩的目录，可对目录下的文件进行压缩后打包
--slevel <int> : 设置seq的压缩阶乘，默认是【10】
--verify <int> : 设置每个数据块的校验方式，默认是【1】【0：不校验 1：校验整个数据块 2：分别校验name,seq,qual】

3.6.3 解压功能, 子命令【decompress】

解压参数如下：

-h, --help : 获取解压参数的使用帮助说明
-r, --ref <dir/file> : 设置输入的具体参考序列路径，该路径下需要存在对应生成的索引文件。或者输入的物种识别库目录，该目录下需要存在各个物种的索引文件。
-t, --thread <int> : 设置线程数，默认是【8】
-f, --force : 设置输出文件是否强制覆盖已有的同名文件
-i, --input <file> : 设置输入的压缩结果文件路径
-o, --output <file> : 设置输出的解压文件路径
--rawtype : 设置解压输出文件和压缩原始文件格式保持一致，只对mgz格式文件生效
--dcheck : 设置解压完成且数据落盘后，再读取解压落盘数据块，并对块进行校验，保证解压的完整性
-x, --extract : 提取压缩包的一个或者多个文件，需要输入文件是【-a, --archive】生成的打包文件
-l, --list : 显示压缩包内的文件信息，需要输入文件是【-a, --archive】生成的打包文件
--show : 显示压缩文件的文本md5值，需要压缩时指定【--calcmd5】

3.7 license-proxy

可执行文件 license-proxy 参数如下：

-h, --help：打印帮助信息
--license <LICENSE\_PATH>：License 文件路径
--bind <BIND\_ADDR>：监听地址
-d, --daemon：是否在后台启动

3.8 report

对WGS/WES分析结果统计文件进行整理，画图，并生成HTML格式的报告。参数如下：

--sample : 样本名称
--filter : 过滤目录路径
--bam_stat : BAM统计文件路径
--vcf_stat : VCF统计文件路径
--output : 输出报告的目录
--is_se : （可选）如果使用单端测序，加上该标志。

3.9 lickit

用于检查网络的联通性，以及查询用户可用的线程数。

--ping <ip:port> : 检查网络是否联通
--query <ip:port> : 查询用户当前可用的线程数
--uplog <ip:port logpath [msg] > ：用户主动上传问题日志

3.10 小工具（Utility tools）

3.10.1 extract-vcf

常规vcf文件每行含有8列字段，其中6，7，8列内容占用空间大但是程序不需要这些信息，为了减小IO压力，该工具只从vcf文件中提取前5列信息，后3列内容置为*号。主要参数如下：

--known-sites <file> : 输入vcf文件，支持文本和gz压缩格式；
--output-mini-vcf <file>：输出vcf文件，若输出文件名带有gz, 则为压缩格式；

3.10.2 bam-stat

根据bam文件，统计比对信息，在WGS流程中，该功能已集成到variantCaller中，也可以单独运行。其参数为：

--bam <file> : 输入bam文件路径
--bed <file> : 目标区间，如果是WGS数据，可以指定非N区文件（如果不方便提供，使用variantCaller的bam统计结果即可）。如果是WES数据，则指定目标区域文件
--output <file> : 输出文件路径

3.10.3 vcf-stat

根据genotyper后的vcf文件，统计变异信息，包括snp数量等，其参数为：

--vcf <file> : 输入vcf文件路径，支持文本和gz格式

结果默认输出到标准输出，可以重定向到指定文件（参照4.1的step 5）。

3.10.4 tbi2lix

-i, --input FILE: 输入tbi索引文件
-o, --output FILE: 输出lix索引文件
-m, --min-shift INT: 设置lix线性索引的最小区间大小为2^INT (默认值14，对应区间大小16K)
-h, --help: 打印帮助信息并退出

4. 快速开始——使用示例脚本和数据

按照1.4部署好软件后，获取quick start数据包(从销售经理处获取)，解压后修改示例脚本中的DCS_HOME和PROXY_HOST值，DCS_HOME为软件包解压后的路径，PROXY_HOST为联网节点的ip和1.4中部署时指定的端口（默认8909）。不同应用场景执行相应的示例脚本。

tar xzvf dcs-quick-start-xxxx.tar.gz
cd dcs-quick-start

4.1 WGS

参考脚本为quick_start_wgs.sh

#!/bin/bash

# This script provides a quick start guide for using the dcs tool to analyze whole-genome sequencing data.
# The script demonstrates how to build the index of the reference genome, align the reads, 
# recalibrate the base quality scores, call variants, and filter the variants.
# if you have any questions, please contact us at cloud@stomics.tech

# set the location of the dcs tool
export DCS_HOME=/path/to/dcs

if [ ! -d "$DCS_HOME" ]; then
    echo "--- Error: DCS_HOME directory does not exist: $DCS_HOME"
    exit 1
fi
if [ ! -r "$DCS_HOME" ]; then
    echo "--- Error: No read permission for DCS_HOME: $DCS_HOME"
    exit 1
fi

# Before using the dcs tool, you must obtain a license file and start the authentication proxy program 
# on a node that can connect to the internet.

# Get the local IP address, which is used for license application. 
# The output data field of the following command indicates the IP address.
# curl -X POST https://cloud.stomics.tech/api/licensor/licenses/anon/echo

# start the proxy program
# LICENSE=<path/to/license/file>
# $DCS_HOME/bin/dcs licproxy --license $LICENSE

# Set the following environment variables
export PROXY_HOST=127.0.0.1:8909

# check the status of the proxy program
$DCS_HOME/bin/dcs lickit --ping $PROXY_HOST

# query the available resources provided by the certification
$DCS_HOME/bin/dcs lickit --query $PROXY_HOST

# Get the directory where the script is located
SCRIPT_PATH=$(realpath "$0" 2>/dev/null || readlink -f "$0" 2>/dev/null || echo "$0")
SCRIPT_DIR=$(dirname "$SCRIPT_PATH")

# Set the following variables for the dcs tool
FQ1=$SCRIPT_DIR/data/fastq/simu.r1.fq.gz
FQ2=$SCRIPT_DIR/data/fastq/simu.r2.fq.gz
FA=$SCRIPT_DIR/data/ref/chr20.fa
KN1=$SCRIPT_DIR/data/known_sites/1000G_phase1.snps.high_confidence.hg38.chr20.vcf.gz
KN2=$SCRIPT_DIR/data/known_sites/dbsnp_151.hg38.chr20.vcf.gz
KN3=$SCRIPT_DIR/data/known_sites/hapmap_3.3.hg38.chr20.vcf.gz
KN4=$SCRIPT_DIR/data/known_sites/Mills_and_1000G_gold_standard.indels.hg38.chr20.vcf.gz

nthreads=8 
sample=simu
group="@RG\\tID:sample\\tLB:sample\\tSM:sample\\tPL:COMPLETE\\tCN:DCS"

# run the wgs pipeline ------------------------------------------------------------------------------------

# check the existence of the index files
for file in $FA.0123 $FA.amb $FA.ann $FA.bwt $FA.index1 $FA.index2 $FA.pac $FA.sa;
do
    if [ ! -f $file ]; then
        echo "File $file does not exist, try to build the index ..."
        $DCS_HOME/bin/dcs aligner --threads 16 --build-index $FA
        break;
    fi
done

# Step 0: Set the working directory
workDir=$SCRIPT_DIR/result_wgs
mkdir -p $workDir
mkdir -p $workDir/${sample}.qcdir 

# Step 1: Alignment
$DCS_HOME/bin/dcs aligner --threads $nthreads --aln-index $FA --fq1 $FQ1 --fq2 $FQ2 --read-group $group --no-filter --fastq-qc-dir $workDir/${sample}.qcdir --bam-out $workDir/${sample}.align.bam

# Step 2: base quality score recalibration
$DCS_HOME/bin/dcs bqsr --threads $nthreads --in-bam $workDir/${sample}.align.bam --reference $FA --known-sites $KN1 --known-sites $KN2 --known-sites $KN3 --known-sites $KN4 --recal-table $workDir/${sample}.recal.table

# Step 3: variant calling
$DCS_HOME/bin/dcs variantCaller --threads $nthreads --input $workDir/${sample}.align.bam --output $workDir/${sample}.variantCaller.g.vcf.gz --reference $FA --recal-table  $workDir/${sample}.recal.table

# Step 4: genotype calling
$DCS_HOME/bin/dcs genotyper --threads $nthreads --input $workDir/${sample}.variantCaller.g.vcf.gz --output $workDir/${sample}.genotyper.vcf.gz --dbsnp $KN2 -s 30.0

# Step 5: generate the final report
$DCS_HOME/bin/dcs vcf-stat --vcf $workDir/${sample}.genotyper.vcf.gz >$workDir/vcfStat.txt

$DCS_HOME/bin/dcs report --sample ${sample} --filter $workDir/${sample}.qcdir --bam_stat $workDir/bamStat.txt --vcf_stat $workDir/vcfStat.txt --output $workDir/report

修改文件中的环境变量后，直接运行即可。

# 修改DCS_HOME和PROXY_HOST值
vi quick_start_wgs.sh
sh quick_start_wgs.sh

4.2 WES

与WGS步骤基本相同，仅在variantCaller步骤有区别，该步骤需要增加一个区间参数(-L)，填上wes区间的bed文件

# Step 3: variant calling
$DCS_HOME/bin/dcs variantCaller --threads $nthreads --input $workDir/${sample}.align.bam --output $workDir/${sample}.variantCaller.g.vcf.gz --reference $FA --recal-table  $workDir/${sample}.recal.table -L <wes.target.bed>

4.3 Joint Calling

参考脚本为quick_start_jointcalling.sh，与WGS类似，修改其中的DCS_HOME和PROXY_HOST环境变量，此外dcs jointcaller需要设置JAVA_HOME为jdk8，并将spark/bin(spark版本2.4.5及以上)加入到PATH环境变量。

# This script provides a quick start guide for using the dcs jointcaller to perform joint calling on multiple gvcf files
# if you have any questions, please contact us at cloud@stomics.tech


# set the location of the dcs tool
export DCS_HOME=/path/to/dcs


# dcs jointcaller is a wrapper of DPGT, which is a spark java application
# set JAVA_HOME and add spark/bin to PATH
export JAVA_HOME=/path/to/jdk8
export PATH=/path/to/spark/bin:$PATH


# Before using the dcs tool, you must obtain a license file and start the authentication proxy program 
# on a node that can connect to the internet.


# Get the local IP address, which is used for license application. 
# The output data field of the following command indicates the IP address.
# curl -X POST https://uat-cloud.stomics.tech/api/licensor/licenses/anon/echo?cliIp=true


# start the proxy program
# LICENSE=<path/to/license/file>
# DCS_HOST=0.0.0.0:8909
# $DCS_HOME/bin/licproxy --command start --license $LICENSE --bind $DCS_HOST --log-level INFO


# Set the following environment variables to your desired values
export PROXY_HOST=127.0.0.1:8909


# check the status of the proxy program
$DCS_HOME/bin/dcs lickit --ping $PROXY_HOST


# query the available resources provided by the certification
$DCS_HOME/bin/dcs lickit --query $PROXY_HOST


# Get the directory where the script is located
SCRIPT_PATH=$(realpath "$0" 2>/dev/null || readlink -f "$0" 2>/dev/null || echo "$0")
SCRIPT_DIR=$(dirname "$SCRIPT_PATH")


# Set the following variables for dcs jointcaller
# gvcf directory
GVCF_DIR=$SCRIPT_DIR/data/gvcf
# target region
REGION=chr20:1000000-2000000
# reference fasta file
FA=$SCRIPT_DIR/data/ref/chr20.fa


# number of threads
nthreads=4
# java heap max memory
memory_size=8g


# Step 0: Set the working directory
workDir=$SCRIPT_DIR/result_jointcalling
mkdir -p $workDir


# Step 1: Set input file and output dir
# dcs jointcaller input file
GVCF_FOFN=$workDir/gvcf.fofn
ls ${GVCF_DIR}/*gz > ${GVCF_FOFN}
# dcs jointcaller output directory
OUT_DIR=$workDir/result


# Step 2: Run dcs jointcaller
$DCS_HOME/bin/dcs jointcaller \
    --input ${GVCF_FOFN} \
    --output ${OUT_DIR} \
    --reference ${FA} \
    --jobs ${nthreads} \
    --memory ${memory_size} \
    -l ${REGION}

4.4 SeqArc

参考脚本为quick_start_seqarc.sh，与WGS类似，修改其中的DCS_HOME和PROXY_HOST环境变量。

#!/bin/bash


# set the location of the dcs tool
export DCS_HOME=/path/to/dcs


# Set the following environment variables to your desired values
export PROXY_HOST=127.0.0.1:8909


# check the status of the proxy program
$DCS_HOME/bin/dcs lickit --ping $PROXY_HOST


# query the available resources provided by the certification
$DCS_HOME/bin/dcs lickit --query $PROXY_HOST




# Get the directory where the script is located
SCRIPT_PATH=$(realpath "$0" 2>/dev/null || readlink -f "$0" 2>/dev/null || echo "$0")
SCRIPT_DIR=$(dirname "$SCRIPT_PATH")


nthreads=2
FQ1=$SCRIPT_DIR/data/fastq/simu.r1.fq.gz
FA=$SCRIPT_DIR/data/ref/chr20.fa
ARCFA=$SCRIPT_DIR/data/arcref/
mkdir -p $ARCFA




workDir=$SCRIPT_DIR/result_seqarc
mkdir -p $workDir


# Step 1: create index
$DCS_HOME/bin/dcs SeqArc index -r $FA -o $ARCFA
 
# Step 2: compress 
$DCS_HOME/bin/dcs SeqArc compress -t $nthreads -r $ARCFA/chr20.fa -i $FQ1 -o $workDir/test 


# step 3 : decompress
$DCS_HOME/bin/dcs SeqArc decompress -t $nthreads -r $ARCFA/chr20.fa -i $workDir/test.arc -o $workDir/simu.r1.fq

5. 发版说明

v1.5.0

支持使用加密狗(dongle)来做离线认证，达到单机使用本工具的目的。

模块	类型	描述
所有模块	功能开发	增加使用加密狗来进行离线license认证的功能，运行机器可以不联网使用DCS Tools
WGS/WES	问题修复	genotyper：修复内存占用较多的问题

v1.4.0

模块	类型	描述
WGS/WES	功能开发	genotyper增加--include-non-variant-sites参数，与GATK的GenotypeGVCFs的同名参数功能类似，在VCF中保留GVCF的非变异block信息并将其展开，方便下游遗传病分析等场景。注意该参数开启时，需要设置ref文件(-R)
SeqArc	问题修复	修复获取用户磁盘可用空间异常的bug

v1.3.0

模块	类型	描述
WGS/WES	问题修复	aligner: 1. 修复单行长度过长的fasta引起生成fai文件的问题。2. 修复arm架构欧拉操作系统的析构bug variantCaller: 1. 修复某些场景下的段错误。2. 修复某些物种情况下内存问题
SeqArc	功能开发	实现了windows解压工具
SeqArc	功能开发	支持arc直接解压为gz格式，并支持管道模式
SeqArc	功能开发	支持U碱基的压缩和解压
体细胞突变检测	功能开发	新增该模块

v1.2.0

支持arm指令架构，并支持样本量和数据量(压缩)统计，配合按样本量数据量的license模式。

模块	类型	描述
WGS/WES	问题修复	bqsr:修复染色体长度超过2G时的bug variantCaller:修复-L参数部分场景下的bug，修复gvcf索引文件问题
	功能开发	aligner:增加共享内存功能，需要开启--useSharedMemIndex参数 variantCaller:1.增加15x覆盖度统计结果 2.兼容有overlap的bed文件 report:更新报告版本号，增加15x覆盖度统计
SeqArc	功能开发	实现了单独的解压工具
	功能开发	实现了基因库的统计功能
JointCalling	问题修复	修复了分区end bug

v1.1.0

模块	类型	描述
WGS/WES	问题修复	解决aligner内存泄漏问题
	问题修复	解决aligner在构建某些ref fasta索引时出现卡死问题
SeqArc	功能开发	使用simde来实现跨平台指令集
	功能开发	实现了单独的解压工具
	功能开发	实现了基因库的统计功能

v1.0.1

改动模块：aligner, report

模块	类型	描述
WGS/WES	问题修复	修复了aligner某种场景下coredump的问题
	问题修复	修复了aligner输出文件为不带路径的纯文件名时的问题
	问题修复	将aligner生成的bam索引文件重命名为.bam.bai，不再是.bai
	问题修复	修复report模块深度累积频率图潜在问题
	问题修复	quick_start包中wgs脚本中增加set -e，遇到错误时及时退出

v1.0.0

模块	类型	描述
WGS/WES	功能开发	新增比对和变异相关信息统计功能
SeqArc	功能开发	按照avs-g标准，重构了项目框架
	功能开发	增加了长读长数据的压缩功能
	功能开发	调整了参数解析方式，增加了子命令和长短参数

6. 注意事项

6.1 WGS/WES

比对时需要参考序列索引文件，用aligner提前准备好，避免找不到文件报错
bqsr步骤默认只输出recal.table，如果需要碱基质量校正后的bam文件，需要设置--out-bam参数
在WES场景下做比对结果统计时，可以有两种方式，一是在variantCaller步骤指定interval参数为wes bed文件，二是单独运行bam-stat工具，设置--bed参数。如果不添加bed文件，默认统计的是全基因组范围，导致覆盖度深度等信息结果不准

6.2 Joint Calling

输入的gvcf文件需要带上tbi索引文件。
参考基因组fasta需要fai和dict文件。
样本量很大时，建议参考7中的运行示例设置内存，避免内存设置过小导致内存溢出。

6.3 SeqArc

压缩输入的fastq文件，文件名后缀需要是 *.fq *.fastq *.fq.gz *.fastq.gz，否则认为文件类型不正确
输入的参考序列文件，需要是文本文件，文件名后缀需要是*.fa *.fasta，否则认为文件类型不正确
解压输入的arc文件，需要是本程序压缩的结果文件，否则认为文件类型不正确。
解压输入的参考序列文件，需要和压缩的参考文件保持一致，如果不一致，会报错提示:[ref load md5 error]
fastq如果不完整，会报错提示[read fastq error]
read如果seq和qual不等长，会报错提示[seqlen isnot equal quallen]
压缩，解压如果文件读写异常，会报错提示[read file err] [write file err]
解压时，如果数据块校验失败，会提示报错[block check fail]，这可能是压缩时异常，或者压缩数据没有正确保存。
需要设置 ulimit -n，对于运行时的崩溃，会生成对应的coredump。

6.4 License Proxy

工具 DCS Tools 或 lickit 无法连接 licproxy。

如果您遇到了类似如下错误提示：

connection refused
couldn't connect to server

请按照如下步骤进行排查：

在运行 DCS Tools 或 lickit 的机器通过如下命令行检查与 License 代理是否联通

curl -v http://$PROXY_HOST/api/licensor/licenses/anon/pool

请将 $PROXY_HOST 替换成您部署 licproxy 的内网 IP 地址和端口，例如 172.20.9.149:8909，而不是您在获取 License 文件前执行获取联网机器的出口 IP 地址！

如果运行 DCS Tools 或 lickit 的机器和运行 licproxy 在同一台机器，您可以将 $PROXY_HOST 替换为 127.0.0.1:8909

预期返回包含 Success，若提示无法连接，则请继续按下面的步骤检查 License 代理进程是否存在。

在部署 licproxy 的机器上查看进程是否存在

ps aux | grep licproxy

若进程不存在，则请先按照上文 1.4 软件部署进行操作。若进程存在，则请联系您们的 IT 运维确保运行DCS Tools 或 lickit 的机器可以通过上文步骤 1 访问 licproxy 所在机器，若网络不通则请向 IT 运维申请开通。

检查投递任务的脚本或命令行是否正确设置变量 PROXY_HOST

请检查您使用的脚本或命令行是否覆盖环境变量 PROXY_HOST，例如 licproxy 部署在 172.20.9.149:8909，那么您在运行脚本或命令行之前务必先设置:

export PROXY_HOST=172.20.9.149:8909
./path/to/your
# 或者
PROXY_HOST=172.20.9.149:8909 /path/to/your

License 认证常见错误提示

Permission denied（无权限或验证失败）
Size must be greater than 0（提交线程数必须大于零）
Pool size exceeded（提交线程数大于当前线程数）
License expired（许可证已过期）
Unknown error（未知错误）

7. 性能和运行时间

7.1 WGS

在阿里云的ecs.i4g.8xlarge（32核，128G内存）机型上，存储使用SSD，分别对HG001 30X WGS NovaSeq、HG001 30X DNBSEQ-G400和HG005 40X WGS数据进行测试，dcs tools需要1.82小时、1.91小时和2.45小时完成从FASTQ到VCF的过程。

数据	运行时间（h）	线程数	最大内存
HG001 30X NovaSeq	1.82	32	101
HG001 30X DNBSEQ-G400	1.91	32	100
HG005 40X DNBSEQ-G400	2.45	32	120

7.2 SeqArc

在阿里云的ecs.c6a.xlarge(4核，8G内存)机型上，针对NA12878 (30X WGS)数据进行压缩和解压测试：

压缩测试结果：

输入数据	时长	压缩率（相比.gz输入数据）
r1.fq.gz（27G）	27m 24s	5.17
r2.fq.gz （30G）	29m 14s	4.10

解压测试结果：

输入数据	时长
r1.fq.arc	14m 32s
r2.fq.arc	14m 25s

7.3 Joint Calling

在公开数据1KGP样本集和内部的多个大规模人群样本集上测试，dcs jointcaller(DPGT)的计算性能表现如下表：

数据	样本数	进程数(每个进程分配6g内存)	核时	运行时间
1KGP	2504	256	6963	27.2 hours
Internal 10K	9165	256	21376	83.5 hours
Internal 52K	52000	4400	407760	~6 days
Internal 105K	105000	3675	1026155	~19 days

8. FAQ

8.1 部署相关问题

1. DCS Tools对平台的要求？

DCS Tools 设计为运行在Linux系统的可执行程序;

推荐的Linux发行版为：Centos 7，Debian 8，Ubuntu 14.04及以上的版本。

2.对系统硬件的要求？

cpu 至少有8核，mem至少有128G，并且建议使用读写速度更快的SSD硬盘。

3.软件部署环节是否需要联网？

DCS Tools运行时会进行 License 验证，以确保合法性，因此需要一台可以联网（用来与验证服务端通信）的机器，其它机器（往往是计算节点）不需要联网，保证能与联网机器通信即可。当然，单台联网机器也可以部署本软件。

4.软件部署都需要哪些文件？

软件包+License 文件，可以通过云平台(cloud@stomics.tech)或者销售经理获取。

我们支持30天免费试用，可联系销售经理。

5.license proxy部署成功后，为什么运行DCS Tools时还会出现license相关错误？

在license proxy部署后，可以通过文档中提供的命令，确认与云平台的连接是否成功。另外每个license都有对应线程数上限，如果使用达到了上限，也会导致新任务无法成功启动，需要等待正在运行的任务结束或者扩充线程数。

8.2 工具相关问题

1.Joint calling输出的不是合并的gvcf，而是vcf？

由于传统一次性生成多样本 gvcf 文件计算量大且占用存储空间，我们未采用该策略来获取所有样本的 gvcf 结果。建议用户保留各样本的 gvcf 文件，后续若需对特定样本进行联合调用（joint calling），直接基于单样本 gvcf 文件运行即可。

2.WGS是否支持非二倍体物种的分析？

DCS Tools的变异检测流程是基于二倍体检测模型构建的，因此WGS暂无法对多倍体样本开展有效的变异检测工作。

3.WGS数据运行时间为啥比文档中的要明显长？

除数据量因素外，WGS流程的运行时间还会受到存储设备读写速度的制约。在我们的测试环境中，采用了具备高速读写性能的SSD固态硬盘，以尽可能降低该因素对流程运行时间的影响。

4.压缩测试用的是什么平台的数据？

目前DCS Tools所用压缩方法已实际压缩数据达几十PB，在开发阶段开展的大规模测试中，最具代表性的数据集为 AVS-G 参考测试集。该数据集抽取自 NCBI-SRA 库，涵盖了13个最具代表性的物种，包含39组 FASTQ 数据。在样本属性、实验方法、测序技术、测序代数以及测序平台等方面，集尽可能全面地覆盖了 NCBI 上的各类情况。

作为参考，DCS Tools压缩方法在该测试集上的压缩率为8.11，而 gzip 的压缩率为4.15。鉴于物种、测序平台等不同属性均会对压缩率产生一定影响，建议用户结合DCS Tools及同类工具在自身数据上的实际测试结果进行决策。

AVS-G 参考测试集相关详细资料可通过销售经理，或者公众号后台联系我们获取。

5.压缩100GB FASTQ 源文件，DCS Tools与常用的 pigz 相比如何？

在32线程环境对人类100GB WGS的PE数据进行测试，测试结果如下：

测试数据	pigz压缩率	pigz压缩速度	pigz CPU占用率	DCS Tools压缩率	DCS Tools压缩速度	DCS Tools CPU占用率
BGI-SEQ500（ERR2755197）	3.93	450MB/s	3224%	5.66	937MB/s	3177%
NovaSeq（SRR10965088）	4.9	220MB/s	3175%	21.15	794MB/s	3147%

6.同平台的不同FASTQ文件压缩率会不一样么？主要原因有哪些？

FASTQ文件主要包含测序序列和质量分数两个部分，差异也出自这里。

首先是测序序列，DCS Tools推荐使用在压缩&解压时加入参考序列的模式，可以有效提升序列的压缩率，而参考序列是该物种的基因组序列，那么对于转录组测序来说这个模式的效果就比较差，而宏基因组测序难以使用该模式。即便对于基因组测序来说，不同平台/型号的测序准确率也是不同的，一般来说测序越准确压缩率就越好。

然后是质量分数，首先不同型号的质量分数的种类是不同的，质量值种类一般分为40和4两种，显然种类越少压缩率越好，这也是它们压缩率差异的主要来源。另外，质量分数本身随机性较强，这也与测序仪强相关，随机性越强的数据压缩率就越差。

DCS Tools 用户手册

# 1. 介绍

# 1.1 描述

# 1.2 优势和价值

# 1.3 平台要求

# 1.4 软件部署（在线认证）

# 1.4.1 获取联网节点出口IP地址

# 1.4.2 获取联网节点 MAC 地址

# 1.4.3 获取License文件

# 1.4.4 获取软件包

# 1.4.5 在联网节点部署 License Proxy

# 1.4.6 运行dcs工具

# 1.4.7 软件更新后的部署

# 1.5 软件部署（离线认证）

# 1.5.1 获取软件和USB加密锁设备

# 1.5.2 开启非root用户使用USB加密锁设备的权限

# 1.5.3 运行dcs工具

# 1.5 工具列表

# 2. 典型用法

# 2.1 WGS

# 2.1.1 准备工作

# 2.1.2 序列比对和标记重复

# 2.1.3 碱基质量值矫正

# 2.1.4 变异检测

# 2.1.5 报告生成

# 2.2 WES

# 2.3 Joint Calling

# 2.4 FASTQ压缩

# 2.4.1 环境与输入输出要求

# 2.4.1.1 待压缩文件要求

# 2.4.1.2 参考文件要求

# 2.4.1.3 压缩输出文件格式

# 2.4.2 索引构建

# 2.4.2.1 用法（Usage）

# 2.4.2.2 功能说明

# 2.4.2.3 参数说明

# 2.4.3 压缩

# 2.4.3.1 用法（Usage）

# 2.4.3.2 功能说明

# 2.4.3.3 参数说明

# 2.4.4 解压

# 2.4.4.1 用法（Usage）

# 2.4.4.2 功能说明

# 2.4.4.3 参数说明

# 2.4.5 检查

# 2.4.5.1 用法（Usage）

# 2.4.5.2 功能说明

# 2.4.5.3 参数说明

# 2.4.6 输出统计信息

# 2.4.6.1 用法（Usage）

# 2.4.6.2 功能说明

# 2.4.6.3 参数说明

# 2.4.7 参数选择与使用建议

# 2.4.8 示例

# 2.4.8.1 索引构建

# 2.4.8.2 使用dcs进行压缩

# 2.4.8.3 使用dcs进行解压

# 2.4.8.4 使用单独解压工具进行解压

# 2.4.9 注意事项

# 3. 工具参数详细说明

# 3.1 aligner

# 3.2 bqsr

# 3.3 variantCaller

# 3.4 genotyper

# 3.5 jointcaller (DPGT)

# 3.6 SeqArc

# 3.6.1 创建索引功能， 子命令【index】

# 3.6.2 压缩功能, 子命令【compress】

# 3.6.3 解压功能, 子命令【decompress】

# 3.7 license-proxy

# 3.8 report

# 3.9 lickit

# 3.10 小工具（Utility tools）

# 3.10.1 extract-vcf

# 3.10.2 bam-stat

# 3.10.3 vcf-stat

# 3.10.4 tbi2lix

# 4. 快速开始——使用示例脚本和数据

# 4.1 WGS

# 4.2 WES

1. 介绍

1.1 描述

1.2 优势和价值

1.3 平台要求

1.4 软件部署（在线认证）

1.4.1 获取联网节点出口IP地址

1.4.2 获取联网节点 MAC 地址

1.4.3 获取License文件

1.4.4 获取软件包

1.4.5 在联网节点部署 License Proxy

1.4.6 运行dcs工具

1.4.7 软件更新后的部署

1.5 软件部署（离线认证）

1.5.1 获取软件和USB加密锁设备

1.5.2 开启非root用户使用USB加密锁设备的权限

1.5.3 运行dcs工具

1.5 工具列表

2. 典型用法

2.1 WGS

2.1.1 准备工作

2.1.2 序列比对和标记重复

2.1.3 碱基质量值矫正

2.1.4 变异检测

2.1.5 报告生成

2.2 WES

2.3 Joint Calling

2.4 FASTQ压缩

2.4.1 环境与输入输出要求

2.4.1.1 待压缩文件要求

2.4.1.2 参考文件要求

2.4.1.3 压缩输出文件格式

2.4.2 索引构建

2.4.2.1 用法（Usage）

2.4.2.2 功能说明

2.4.2.3 参数说明

2.4.3 压缩

2.4.3.1 用法（Usage）

2.4.3.2 功能说明

2.4.3.3 参数说明

2.4.4 解压

2.4.4.1 用法（Usage）

2.4.4.2 功能说明

2.4.4.3 参数说明

2.4.5 检查

2.4.5.1 用法（Usage）

2.4.5.2 功能说明

2.4.5.3 参数说明

2.4.6 输出统计信息

2.4.6.1 用法（Usage）

2.4.6.2 功能说明

2.4.6.3 参数说明

2.4.7 参数选择与使用建议

2.4.8 示例

2.4.8.1 索引构建

2.4.8.2 使用dcs进行压缩

2.4.8.3 使用dcs进行解压

2.4.8.4 使用单独解压工具进行解压

2.4.9 注意事项

3. 工具参数详细说明

3.1 aligner

3.2 bqsr

3.3 variantCaller

3.4 genotyper

3.5 jointcaller (DPGT)

3.6 SeqArc

3.6.1 创建索引功能，子命令【index】

3.6.2 压缩功能, 子命令【compress】

3.6.3 解压功能, 子命令【decompress】

3.7 license-proxy

3.8 report

3.9 lickit

3.10 小工具（Utility tools）

3.10.1 extract-vcf

3.10.2 bam-stat

3.10.3 vcf-stat

3.10.4 tbi2lix

4. 快速开始——使用示例脚本和数据

4.1 WGS

4.2 WES

4.3 Joint Calling